Les espèces de filaires parasites du chien

Acanthocheilonema dracunloïdes

Acanthocheilonema dracunloïdes a une taille supérieure à celle d’Acanthocheilonema reconditum. Le mâle mesure 15 à 32 mm de long sur 100 à 200 μm. Son extrémité caudale est spiralée. Les papilles génitales, au nombre de 5, sont très petites. Les spicules sont inégaux et mesurent respectivement 320 à 390 μm et 120 à 160 μm. La femelle mesure 30 à 60 mm de long et 100 à 300 μm de large (Schwan et Schröter. 2006). L’extrémité postérieure est souvent relevée vers la face dorsale. La vulve est éloignée de 1000 μm de l’extrémité céphalique.

 Cercopithifilaria spp.
Les filaires adultes de Cercopithifilaria grassi sont longues de 7 à 8 mm pour les mâles et de 17 à 21 mm pour les femelles. L’extrémité antérieure présente un rétrécissement suivi de deux renflements. Pour les adultes de Cercopithifilaria bainae : les mâles mesurent entre 9 mm à 12 mm de long sur 44 μm de large et les femelles 14 mm à 19 mm de long pour 72 à 100 μm de large (Otranto et al. 2011). La morphologie des adultes Cercopithifilaria sp.II n’est pas connue (Ionică et al. 2014).

 Onchocerca lupi
Les adultes sont de minces vers blanchâtres : les mâles mesurent 4 à 5 cm de long pour 100 à 200 μm de diamètre, les femelles dépassent les 10 cm pour un diamètre de 200 à 400 μm. L’extrémité antérieure est arrondie. La cuticule est striée transversalement.

Chez le mâle, les papilles caudales sont grandes et charnues, le spicule gauche, long de 160-200 μm est légèrement courbé, tubulaire et tandis que le spicule droit est 2 fois plus court et plus large dans sa partie proximale (Sréter et Széll. 2008). Chez la femelle, la cuticule est composée de deux couches distinctes avec une couche externe qui porte des arêtes disposées en anneau et une couche plus interne avec des stries.

Hôtes définitifs

Le chien et les canidés sauvages tels que le renard, le loup et le coyote sont les hôtes définitifs classiques de Dirofilaria immitis et en constituent les principaux réservoirs. Néanmoins, d’autres espèces peuvent permettre le développement complet du parasite qui présente une faible spécificité d’hôte : c’est le cas des félidés, des mustélidés tels que le furet, des ursidés mais aussi des pinnipèdes (otaries, phoques) chez qui une microfilarémie transitoire a été rapportée (Ducos de Lahitte. 1990).

Les chats sont moins réceptifs que les chiens et ne s’infestent que dans les zones de forte endémie. La prévalence observée chez les félins correspond à 5 à 20% de la prévalence observée dans la population canine pour une région donnée. L’infestation chez le chat est caractérisée par un faible nombre de filaires adultes, 2 à 4 en moyenne qui ont une durée de vie de 2 à 4 ans au maximum. La microfilarémie est rare : seuls 20% des chats infestés par des vers adultes présentent des microfilaires sanguines et ces dernières ne survivent pas plus d’un à 2 mois (Lee et Atkins. 2010) : cette espèce n’est donc pas un réservoir majeur du parasite. Les chats infestés sont souvent asymptomatiques et la guérison spontanée est possible avec la mort des filaires adultes. Il existe pourtant des cas rares d’atteintes respiratoires aigües qui font suite à la réaction inflammatoire liée à l’arrivée des microfilaires dans les artères pulmonaires ou à la mort des adultes.

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Introduction
Partie 1 : Étude bibliographique : La dirofilariose canine à Dirofilaria immitis et les autres filarioses du chien
I. Les espèces de filaires parasites du chien
1) Classification systématique des filaires du chien
2) Répartition géographique
a) Répartition géographique des filarioses canines
b) Répartition géographique des cas zoonotiques liés aux filaires du chien
3) Morphologie des filaires adultes et des microfilaires
a) Morphologie des vers adultes
b) Morphologie des microfilaires (larves L1)
4) Biologie et cycle évolutif
a) Dirofilaria immitis
b) Dirofilaria repens
c) Acanthocheilonema reconditum
d) Acanthocheilonema dracunculoïdes
e) Cercopithifilaria spp
f) Onchocerca lupi
5) La bactérie Wolbachia pipientis, symbiote des filaires
a) Présentation générale
b) Symbiose entre les bactéries et les filaires
c) Wolbachia et Dirofilaria immiti
6) Dirofilaria immitis, agent de la dirofilariose cardio-pulmonaire
a) Épidémiologie de la dirofilariose canine à Dirofilaria immiti
b) Pathogénie de la dirofilariose cardio-pulmonaire
c) Étude clinique chez le chien
d) Eléments d’orientation de biologie clinique
e) Anomalies des images radiographiques, échocardiographiques et de l’électrocardiogramme lors de dirofilariose cardio-pulmonaire
f) Potentiel zoonotique de Dirofilaria immitis
7) Pouvoir pathogène de Dirofilaria repens et des autres filaires parasites du chien
a) Dirofilaria repens
b) Acanthocheilonema reconditum
c) Acanthocheilonema dracunculoïdes
d) Genre Cercopithifilaria
e) Onchocerca lupi
II. Diagnostic expérimental des filarioses canines
1) Mise en évidence et identification des microfilaires
2) Mise en évidence d’antigènes circulants de Dirofilaria immitis
3) Méthodes de diagnostic moléculaire
4) Recommandations actuelles pour optimiser le diagnostic

III. Traitement et prévention de la dirofilariose canine
1) Traitement de la dirofilariose canine à Dirofilaria immitis
2) Prophylaxie de la dirofilariose canine
3) Traitement et prévention des autres filarioses canines
Partie 2 : Partie expérimentale : Mise en place d’une méthode de diagnostic moléculaire par PCR quantitative pour détecter et identifier les microfilaires sanguines de Dirofilaria immitis et de Dirofilaria repens chez le chien
I. Objectifs de l’étude expérimentale
II. Matériels et méthodes
1) Recrutement des chiens et modalités de prélèvements
2) Méthodes diagnostiques
III. Résultats de l’étude expérimentale
1) Résultats du Filarassay® et du Snap 4DX® IDEXX
2) Résultats de la PCR en temps réel
3) Synthèse des résultat
IV. Discussion
1) Population canine étudiée et prélèvements
2) Méthode de concentration pour détecter les microfilaires
3) Test de détection des antigènes de Dirofilaria immitis
4) PCR en temps réel
5) Interprétation des résultats
Conclusion
Bibliographie
Annexes