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Les facteurs environnementaux
Les établissements de santé constituent un environnement dans lequel se trouvent rassembler des personnes infectées et des personnes chez lesquelles le risque d’infection est accru. Les patients atteints d’infections ou porteurs de micro-organismes pathogènes, lorsqu’ils sont hospitalisés, sont des sources potentielles d’infection pour les autres patients et pour le personnel. Ceux qui contractent une infection à l’hôpital constituent à leur tour une source d’infection [29].
Le dépassement de la capacité d’accueil des hôpitaux, la fréquence des transferts de patients entre services, la concentration des patients dans un même secteur ainsi que la vulnérabilité de certains à l’infection tels que les (nouveau-nés, les brûlés ou les patients en unités de soins intensifs) sont des facteurs qui contribuent tous au développement d’infections nosocomiales [29].
Les germes présents dans la flore microbienne peuvent contaminer des objets, des dispositifs médicaux et des substances qui entrent ensuite en contact avec des sites anatomiques vulnérables. De plus, de nouvelles infections associées à des bactéries, par exemple des bactéries véhiculées par l’eau (mycobactéries atypiques) et/ou à des virus ou des parasites sont régulièrement identifiées [29].
Enfin, l’architecture et la structure des services, la qualité de la maintenance de l’environnement, peuvent jouer un rôle dans le risque infectieux.
Une attention particulière doit être portée, avec les services compétents de l’administration hospitalière, au cahier des charges des organismes chargés du bionettoyage, ainsi qu’à la prise en charge de l’entretien quotidien des matériels par les personnels du service.
Les facteurs organisationnels
L’urgence, la densité des soins et des actes nécessaires à la suppléance de fonctions vitales caractérisent la réanimation. Il est évident que plus les malades ont une affection grave, nécessitant de nombreuses suppléances, plus les actes sont nombreux, et plus les risques d’infection s’accroissent. Ces risques sont d’autant plus importants que les actes sont urgents et non programmés, et alors nécessairement effectués dans des conditions exposant à la rupture des procédures d’asepsie. La densité en personnel devient alors un facteur majeur de risque de survenue d’infection.
Il a ainsi été récemment montré qu’en réanimation, le nombre de gestes conduisant à une opportunité d’hygiène des mains dépassait fréquemment 20 par heure. Un ratio infirmiers /patients inférieur à 0,5 accroît le risque de transmission croisée et d’infection de manière sensible. Les réanimateurs ne peuvent que se féliciter que les tutelles aient récemment établi des normes en personnel pour les unités de réanimation, bien que celles-ci restent en dessous des normes pratiquées chez la plupart de nos voisins européens. En tout état de cause, la plupart des services sont actuellement en deçà de ces normes récentes, en partie du fait des déficits en personnel actuellement disponibles.
Les principales infections nosocomiales
La distribution des infections nosocomiales dans les services de réanimation est en général différente de celle observée dans les autres secteurs hospitaliers. Les infections nosocomiales dans les unités de réanimation polyvalente sont dominées par les infections respiratoires, les bactériémies et les infections urinaires. Les bactériémies apparaissent toujours comme la première ou la seconde infection nosocomiale la plus fréquente dans les unités de réanimation.
Infections respiratoires ou pneumopathies nosocomiales
Définition
La définition de la pneumopathie peut reposer sur des critères cliniques et radiologiques faciles à établir mais non spécifiques : opacités radiologiques récentes et progressives au niveau du parenchyme pulmonaire, expectorations purulentes et fièvre d’apparition récente. Le diagnostic est plus spécifique lorsqu’on peut obtenir des échantillons microbiologiques quantitatifs par bronchoscopie protégée.
Epidémiologie
Les pneumopathies nosocomiales s’observent chez plusieurs catégories de patients, principalement les patients sous ventilation artificielle dans les unités de soins intensifs, où leur taux peut atteindre 3 % par jour. La pneumopathie associée à la ventilation assistée possède un taux de létalité élevé, bien que le risque attribuable soit difficile à déterminer du fait de l’importance des co-morbidités.
Les micro- organismes colonisent l’estomac, les voies respiratoires supérieures et les bronches, et provoquent une infection pulmonaire (pneumopathie) ; parmi les risques connus figurent le type et la durée de la ventilation, la qualité des soins respiratoires, la gravité de l’état du patient (insuffisances organiques) et les antécédents d’antibiothérapie [29].
Les pneumopathies nosocomiales sont très souvent des pneumopathies acquises sous ventilation mécanique (PAVM). Les données épidémiologiques montrent une grande variabilité entre les services [22].
Diagnostic
Les Critères diagnostiques des pneumopathies nosocomiales (selon CTINLS pour l’adulte) sont :
Les signes radiologiques:
• deux clichés radiologiques ou plus avec une image évocatrice de pneumonie;
• en l’absence d’antécédents de cardiopathie ou de maladie pulmonaire sous-jacente, une seule radiographie ou un seul examen scannographique suffit.
Les symptômes :
Et au moins un des signes suivants :
Hyperthermie supérieure à 38°C sans autre cause ;
Leucopénie (<4000GB/mm³) ou hyperleucocytose (>12000GB/mm³)
Et au moins un des signes suivants (ou au moins deux des signes suivants pour le diagnostic de pneumonie possible ou clinique uniquement) ;
Apparition de secrétions purulentes ou modifications des caractéristiques (couleur, odeur, quantité, consistance) ;
Toux ou dyspnée ou tachypnée ;
Auscultation évocatrice ;
Aggravation des gaz du sang (désaturation) ou besoins accrus en oxygène ou en assistance respiratoire.
La microbiologie :
Et selon le moyen diagnostique utilisé : une documentation microbiologique est fortement recommandée :
Cas 1
Un diagnostic bactériologique effectué par examen bactériologique protégé avec numération de microorganismes :
Lavage bronchoalvéolaire (LBA) avec seuil supérieur à 10⁴ UFC/ml, ou ;
Supérieur ou égal à 5% de cellules obtenues par LBA avec des inclusions bactériennes au Gram à l’examen direct (classé dans la catégorie diagnostique LBA), ou ;
Brosse de Wimberley avec seuil supérieur à 10³ UFC/ml, ou ;
Prélèvement distal protégé (PDP) avec seuil supérieur à 10³ UFC/ml.
Cas 2
Diagnostic bactériologique effectué par examen bactériologique non protégé avec numération de microorganismes : bactériologie quantitative des secrétions bronchiques avec seuil supérieur à 10⁶UFC/ml (ces seuils ont été validés en l’absence d’antibiothérapie antérieure).
Cas 3
Les méthodes microbiologiques alternatives :
Hémocultures positives (en l’absence d’autre source infectieuse) ;
Culture positive du liquide pleural ;
Abcès pleural ou pulmonaire avec culture positive ;
Examen histologique du poumon évocateur de pneumonie ;
Méthodes microbiologiques alternatives modernes de diagnostic (antigénémies, antigénuries, sérologies, techniques de biologie moléculaire) validées par des études de niveau de preuve élevé.
Cas 4
Bactériologie des expectorations ou examen non quantitatif des secrétions bronchiques.
Cas 5 : Aucun critère microbiologique
Les cas 1, 2 et 3 correspondent aux pneumopathies certaines ou probables. Les cas 4 et 5 correspondent aux pneumopathies possibles, ou même cliniques en l’absence de radiographie pulmonaire [22,70].
Facteurs favorisants
Ils sont liés au patient: l’âge (>70 ans), l’obésité, le tabac, l’alcoolisme, la malnutrition, les immunodéficiences, la pathologie pulmonaire chronique, la ventilation assistée, l’altération de la conscience, la trachéotomie, la chirurgie récente abdominale ou thoracique, les antagonistes des récepteurs H2 à l’histamine [17,26].
Prévention
Elle repose sur la réduction du risque infectieux endogène : l’hygiène orale, nasale, l’acidité gastrique, l’aspiration des secrétions bronchiques, la mobilisation post opératoire précoce.
Elle repose également sur la réduction du risque infectieux exogène : les mesures simple d’hygiène hospitalière, l’isolement, la désinfection du matériel et l’utilisation de solutions stériles, le lavage des mains, le port des gants stérile.
Les mesures générales reposent sur l’antibiothérapie rationnelle et adaptée et l’alimentation entérale [17, 26, 31, 37].
Infections urinaires nosocomiales
Définition
L’infection urinaire est définie par la présence à l’examen cytobactériologique des urines d’au moins 10⁵ bactéries/ml [13, 48, 62].
Dans le cas d’une bactériurie asymptomatique :
Une uroculture quantitative positive (supérieure ou égale à 10⁵micro-organismes/ml), si le patient a été sondé pendant la semaine précédant le prélèvement.
En l’absence de sondage ou d’autres gestes, deux urocultures quantitatives consécutives positives (supérieure ou égale à 10⁵ micro-organismes/ml) au(x) même(s) germe(s) sans qu’il y ait plus de deux (2) germes isolés.
Dans le cas d’une bactériurie symptomatique :
Une fièvre (supérieure à 38°C) sans autre localisation infectieuse et/ou une envie impérieuse et/ou une dysurie et/ou une pollakiurie et/ou une tension sus pubienne avec soit une uroculture positive (supérieure ou égale à 10⁵microorganismes/ml) sans qu’il y ait plus de deux espèces microbiennes isolées, soit une uroculture positive (supérieure ou égale à 10⁵microorganismes/ml) avec leucocyturie (supérieure ou égale à 10⁴/ml) [27, 32,62,70].
Epidémiologie
Ce sont les infections nosocomiales les plus courantes ; 80 % des infections sont liées à un sondage vésical à demeure. Les infections urinaires sont associées à une plus faible morbidité que les autres infections nosocomiales, mais peuvent dans certains cas provoquer une bactériémie potentiellement mortelle [3,29].
Facteurs de risque
Neuf facteurs de risque indépendants peuvent être identifiés : la durée de sondage, l’absence d’urimètre, la colonisation du sac de drainage, le diabète, l’absence d’antibiothérapie, le sexe féminin (le risque est multiplié par 2), les indications de sondage en dehors de celles motivées par un acte chirurgical ou la nécessité de mesurer la diurèse horaire en réanimation, et l’erreur lors des soins de cathéter. L’âge et la sévérité de la pathologie sous-jacente sont relevés par certains. La durée de sondage reste le facteur de risque principal : chaque jour de sondage multiplie le risque de développer une infection urinaire sur sonde [3, 17, 26, 48].
Prévention
Le respect de l’asepsie est fondamental. Le lavage des mains par antiseptique, l’utilisation de gants stériles lors de la pose, l’utilisation de matériel stérile, l’éviction au maximum du sondage urinaire inutile et la réduction de leur durée d’utilisation sont des mesures dont l’efficacité est démontrée. Le niveau de formation professionnelle est primordial.
Infections du site opératoire (ISO)
Critères diagnostiques
Infection superficielle
C’est une infection survenant dans les 30 jours suivant l’intervention et affectant la peau (ou les muqueuses), les tissus sous cutanés ou les tissus situés au-dessus de l’aponévrose de revêtement, diagnostiquée par :
Un écoulement purulent de l’incision,
La présence de microorganisme associé à des polynucléaires neutrophiles à l’examen direct,
L’ouverture de l’incision par le chirurgien avec la présence de l’un des signes suivants: douleur ou sensibilité à la palpation, tuméfaction localisée, rougeur, chaleur ou la présence de microorganisme isolé par culture ou culture non faite (une culture négative, en l’absence de traitement antibiotique, exclut le cas).
Infection profonde
C’est une infection survenant dans les 30 jours suivant l’intervention, ou dans l’année s’il y a eu mise en place d’un implant, d’une prothèse ou d’un matériel prothétique, affectant les tissus ou organes ou espaces situés au niveau ou au-dessous de l’aponévrose de revêtement, ou encore ouverts ou manipulés durant l’intervention, diagnostiquée par :
Un écoulement purulent provenant d’un drain sous-aponévrotique ou placé dans l’organe ou le site ou l’espace.
Une déhiscence spontanée de l’incision ou l’ouverture par le chirurgien et au moins un des signes suivants : une fièvre supérieure à 38◦C, une douleur localisée ou une sensibilité à la palpation, la présence de microorganisme isolé par culture, obtenue de façon aseptique, d’un prélèvement de l’organe ou du site ou de l’espace ou culture non faite.
La présence d’un abcès ou autres signes d’infection observés lors d’une réintervention chirurgicale, d’un examen histopathologique, d’un examen d’imagerie ou d’un acte de radiologie interventionnelle.
Epidémiologie
Elle représente la 3ème cause d’infection nosocomiale. L’infection est en général acquise pendant l’intervention elle-même, avec une origine soit exogène (air, matériel médical, chirurgiens et autres soignants), soit endogène (flore cutanée ou flore présente sur le site opératoire ou, dans de rares cas, sang utilisé en peropératoire). Les micro-organismes infectieux sont divers, et dépendent du type et de la localisation de l’intervention et des anti-infectieux reçus par le patient [29, 32].
Il n’existe pas de données spécifiques aux services de réanimation. Dans les services de chirurgie du réseau ISORaisin, les ISO concernaient 1,46% des opérés entre 1999 et 2005.
Facteurs de risque
Le principal facteur de risque est l’étendue de la contamination peropératoire (chirurgie propre, propre-contaminée, contaminée, sale), elle-même conditionnée par la durée de l’intervention et l’état général du patient. Les autres facteurs en jeu sont la qualité de la technique chirurgicale, la présence de corps étrangers (drains compris), la virulence des micro-organismes, la présence d’une infection concomitante sur un autre site, la pratique du rasage préopératoire et l’expérience de l’équipe chirurgicale.
Prévention
Elle repose sur la réduction de la durée d’hospitalisation avant l’intervention chirurgicale, le traitement des infections préexistantes, la préparation cutanée de la zone opératoire, le lavage chirurgical des mains, l’équipement de protection, l’hygiène du bloc opératoire, la durée d’intervention opératoire, et l’asepsie postopératoire.
Infections liées au cathéter
Définition
Parmi les infections nosocomiales, quatre situations doivent être distinguées :
Contamination du cathéter
Culture positive de l’extrémité du cathéter, « non significative » en culture quantitative ou semi quantitative, en l’absence de signes locaux ou généraux d’infection.
Colonisation du cathéter
Présence d’une culture positive de l’extrémité du cathéter en quantité « significative » (plus de 15 UFC par la technique SQC ; plus de 10³UFC/ml en technique quantitative), en présence de signes généraux attribuables au cathéter.
Localement, il peut exister un érythème, mais sans suppuration locale franche. La colonisation peut provenir d’un foyer à distance au même germe que celui isolé du cathéter.
Infection «clinique» sur cathéter
Présence d’une culture positive de l’extrémité du cathéter ; en présence de signes généraux ou locaux d’infection, avec régression au moins partielle des symptômes lors de l’ablation du cathéter.
Les infections « bactériémiques » sur cathéter
Présence d’une culture positive de l’extrémité du cathéter, associée à une bactériémie secondaire due au même germe que celui isolé du cathéter, en l’absence d’autre foyer infectieux au même germe.
Epidémiologie
La colonisation (définie par la culture positive du cathéter sans tenir compte de l’existence éventuelle de tout signe clinique ou de données microbiologiques associés) est facile à affirmer, reproductible et plus intéressante sur le plan épidémiologique. À l’inverse, les infections locales, générales ou bactériémiques ont un intérêt clinique largement supérieur, mais ne sont pas toujours faciles à affirmer.
Prévention
Certaines règles peuvent permettre de diminuer le risque de survenue de ces infections de cathéter:
la restriction de la voie veineuse et l’ablation des cathéters endovasculaires dès qu’ils ne sont plus indispensables;
le respect de l’asepsie lors de la pose et de l’entretien (lavage des mains et avant-bras jusqu’aux coudes, solution désinfectante) ;
la pose programmée du cathéter dans des conditions d’asepsie stricte. Tout cathéter posé en urgence doit être impérativement changé dès que la situation du malade est stabilisée ;
la désinfection cutanée méticuleuse après nettoyage au savon;
la fixation solide du cathéter avec un pansement occlusif [26] ;
le changement de la ligne veineuse à intervalle de 48-72heures ;
l’utilisation de solutions de perfusion stérile ;
la limitation des indications du cathétérisme ;
l’identification précoce des signes inflammatoires ;
l’hygiène locale.
Bactériémies nosocomiales
L’infection est confirmée comme acquise à l’hôpital si on retrouve au moins une hémoculture positive prélevée au pic thermique (avec ou sans signe clinique) pour les micro-organismes réputés pathogènes ou deux hémocultures positives prélevées lors de ponctions différentes pour les autres micro-organismes [27,70].
Les bactériémies ne représentent qu’une faible proportion des infections nosocomiales (environ 5 %) mais possèdent un taux de létalité élevé – plus de 50 % pour certains micro-organismes. Leur incidence est en augmentation, en particulier pour certains micro-organismes comme Staphylococcus et Candida spp. coagulase-négatifs multirésistants. L’infection peut se développer au point d’insertion cutané d’un dispositif intravasculaire ou sur le trajet sous-cutané d’un cathéter (infection du tunnel). Les micro-organismes qui colonisent le cathéter à l’intérieur du vaisseau peuvent provoquer une bactériémie sans infection externe visible. L’infection prend sa source dans la flore cutanée résiduelle ou temporaire. Les principaux facteurs de risque sont la durée du cathétérisme, le niveau d’asepsie lors de l’insertion, et les soins continus une fois le cathéter en place [29,37].
Autres types d’infections nosocomiales
Il s’agit :
Des infections ostéo-articulaires
Des endocardites sur prothèses
Des méningites nosocomiales
Des infections de l’oeil et de la sphère ORL
Des infections cutanéo-muqueuses
Des infections gastro-intestinales
Des hépatites [27,32]
Les virus
Il existe une possibilité de transmission nosocomiale pour de nombreux virus, notamment ceux des hépatites B et C (transfusions, dialyse, injections, endoscopie), le virus respiratoire syncytial, les rotavirus et les entérovirus (transmis par contact mainbouche et par voie féco-orale). D’autres virus comme le cytomégalovirus, le VIH, le virus Ebola, les virus grippaux, les virus de l’herpès et le virus varicelle zona, sont également transmissibles [29].
Parasites et champignons
Certains parasites (par exemple Giardia lamblia) se transmettent facilement chez l’adulte et l’enfant. De nombreux champignons et autres parasites sont des agents opportunistes et provoquent des infections en cas de traitement antibiotique prolongé et d’immunodépression sévère (Candida albicans, Aspergillus spp., Cryptococcus neoformans, Cryptosporidium). Ils sont une cause majeure d’infection généralisée chez les patients immunodéprimés. La contamination de l’environnement par des germes aéroportés comme Aspergillus spp. présent dans les poussières et le sol est également préoccupante, en particulier lors de la construction d’hôpitaux.
Sarcoptes scabies (agent de la gale) est un ectoparasite qui provoque régulièrement des flambées épidémiques dans les établissements de santé.
Les prélèvements
Les règles
Ils doivent être effectués avant toute antibiothérapie, dans des conditions strictes d’asepsie. Le détail des techniques de prélèvements varie en fonction du produit pathologique. Il faut envoyer le prélèvement au laboratoire avec des renseignements précis sur le malade et son état clinique. Il est important d’insister sur la qualité du prélèvement car celle-ci conditionne la prise en charge thérapeutique. Il faudrait faire les prélèvements au moment des pics fébriles (température supérieure à 38,5°C) ou en cas d’hypothermie (température inférieure à 35°C) et faire au moins trois prélèvements par jour pour augmenter la sensibilité. Il faut faire les prélèvements le plus tôt possible dès la suspicion [27,32].
Les différents types de prélèvements
Prélèvement du sang pour les hémocultures
Examen cytobactériologique des urines
Examen bactériologique des secrétions trachéobronchiques et pulmonaires
Examen cytobactériologique du pus et du liquide péritonéal
Analyse bactériologique des selles
Examen cytobactériologique et chimique du liquide céphalo rachidien
Examen bactériologique des prélèvements oto-rhino pharyngés et ophtalmologiques
Prélèvements génitaux
L’examen au laboratoire
Il comprend plusieurs étapes successives qui sont :
• Un examen macroscopique qui permet d’apprécier la qualité du prélèvement ;
• Un examen microscopique qui comprend un examen direct des bactéries (morphologie, groupements, abondance et mobilité) et un examen cytologique quantitatif et qualitatif ;
• Une culture dans différents milieux ;
• Une coloration des bactéries ;
• Une identification
• Un antibiogramme qui permet de déterminer la sensibilité ou la résistance des différents germes trouvés.
La résistance des bactéries aux antibiotiques
La résistance bactérienne aux antibiotiques est un facteur majeur compliquant la chimiothérapie antibactérienne et le contrôle des maladies infectieuses et de la dissémination de souches multi résistantes.
La résistance peut être naturelle ou acquise.
Notions de résistance
Chaque antibiotique possède un spectre d’activité, c’est à dire un éventail d’espèces bactériennes sensibles qu’il peut inhiber à certaines concentrations. Une espèce qui n’entre pas dans le spectre d’activité d’un antibiotique, est dite résistante. Il existe deux types de résistance :
Résistance naturelle
La résistance naturelle est une caractéristique propre appartenant à l’ensemble des souches d’une espèce bactérienne ou d’un même genre bactérien. Son support est génétique, généralement chromosomique. Son mécanisme est cependant variable.
Résistance acquise
La résistance acquise ne s’applique qu’à certaines souches au sein de la même espèce bactérienne. Elle apparaît chez quelques souches d’une espèce normalement sensible à un antibiotique. Elle est due à une modification génétique: mutation ou apport de matériel génétique étranger.
Mécanismes de résistance
Quatre mécanismes principaux sont responsables de la résistance aux antibiotiques. Il s’agit de modifications de la cible des antibiotiques, de la diminution de la perméabilité bactérienne, de la synthèse d’enzymes inactivant les antibiotiques et du support génétique et l’efflux.
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Table des matières
INTRODUCTION
PREMIERE PARTIE
1. Généralités
1.1. Epidémiologie
1.2. Facteurs de risque
1.2.1. L’hôte
1.2.2. Les facteurs environnementaux
1.2.3. Les facteurs organisationnels
1.3. Modalités de transmission
1.3.1. Source de contamination
1.3.2. Mécanisme de transmission
1.3.2.1. Par contact
1.3.2.2. Par gouttelettes
1.3.2.3. Aérogène
2. Définitions des états infectieux
2.1. Infection simple
2.2. Sepsis
2.3. Choc septique
3. Les principales infections nosocomiales
3.1. Infections respiratoires ou pneumopathies nosocomiales
3.1.1. Définition
3.1.2.Epidémiologie
3.1.3. Diagnostic
3.1.4. Facteurs favorisants
3.1.5. Prévention
3.2. Infections urinaires nosocomiales
3.2.1. Définition
3.1.1. Epidémiologie
3.1.2. Facteurs de risque
3.1.3. Prévention
3.2. Infections du site opératoire
3.2.1. Critères diagnostiques
3.2.1.1. Infection superficielle
3.2.1.2. Infection profonde
3.2.2. Epidémiologie
3.2.3. Facteurs de risque
3.2.4. Prévention
3.3. Infections liées au cathéter
3.3.1. Définition
3.3.1.1. Contamination du cathéter
3.3.1.2. Colonisation du cathéter
3.3.1.3. Infection «clinique» sur cathéter
3.3.1.4. Les infections « bactériémiques » sur cathéter
3.3.2. Epidémiologie
3.3.3. Facteurs de risque
3.3.4. Prévention
3.4. Bactériémies nosocomiales
3.5. Autres types d’infections nosocomiales
4. Microbiologie
4.1. Les différents germes
4.1.1. Les bactéries
4.1.2. Les virus
4.1.3. Parasites et champignons
4.2. Les prélèvements
4.2.1. Les règles
4.2.2. Les différents types de prélèvements
4.3. L’examen au laboratoire
4.4. La résistance des bactéries aux antibiotiques
4.4.1. Notions de résistance
4.4.1.1. Résistance naturelle
4.4.1.2. Résistance acquise
4.4.2. Mécanismes de résistance
DEUXIEME PARTIE
1. Patients et méthodes
1.1. Cadre d’étude
1.1.1. Les locaux
1.1.2. Le personnel
1.1.3. L’organisation des soins
1.2. Type et durée d’étude
1.3. Patients
1.3.1. Critères d’inclusion
1.3.2. Critères de non inclusion
1.4. Méthodologie
1.4.1. Sources de données
1.4.2. Paramètres étudiés
1.4.2.1. Les données socio-démographiques
1.4.2.2. Les données clinques
1.4.2.3. Les données bactériologiques
1.4.2.4. L’antibiothérapie
2. Résultats
2.1. Incidence
2.2. Les données socio-démographiques
2.2.1. Le sexe
2.2.2. L’âge
2.3. Les données cliniques
2.3.1. Pathologie sous-jacente
2.3.2. Délai d’apparition des signes d’infection
2.3.3. Principaux signes retrouvés
2.3.4. Prélèvements réalisés
2.3.5. Foyers infectieux
2.4. Bactériologie
2.4.1.Germes isolés
2.4.1.1.Germes isolés sur les PBP
2.4.1.2.Germes isolés sur les hémocultures
2.4.1.3.Germes isolés aux urocultures et bouts de sonde
2.4.1.4.Germes isolés dans les écouvillonnages
2.4.1.5.Germes isolés sur les bouts de cathéter
2.4.1.6.Répartition selon le type de germe
2.4.2.Sensibilité des germes isolés aux antibiotiques
2.4.2.1.Profil de sensibilité de Klebsiella
2.4.2.2. Profil de sensibilité de Staphylococcus aureus
2.4.2.3. Profil de sensibilié de Pseudomonas aeruginosa
2.4.2.4. Profil de sensibilité d’Escherichia coli
2.4.2.5. Profil de sensibilité d’Acinetobacter baumani
2.4.2.6. Profil de sensibilité d’Enterobacter spp
2.5. L’antibiothérapie
2.5.1. L’antibiothérapie préalable
2.5.2. L’antibiothérapie probabiliste
2.5.3. L’antibiothérapie adaptée
2.6.Evolution
2.6.1.Evolution favorable
2.6.2.La mortalité
2.6.3.La durée moyenne d’hospitalisation
3.Discussion
CONCLUSION
REFERENCES BIBLIOGRAPHIQUES
ANNEXE
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