SAAFA-76-MRRRCH
Description botanique d’Euphorbia retusa
Rappel botanique
Les plantes sahariennes constituent une richesse naturelle pouvant jouer un rôle important dans le développement socio-économique de certaines régions. Elles pourraient, ainsi offrir une source viable de revenus à la population locale. De nos jours, les produits naturels sont une source importante pour la recherche de nouveaux composés actifs contre de nombreuses maladies. L’utilisation thérapeutique des plantes fait partie intégrante des traditions de toutes les cultures. La valorisation médicinale de ces pratiques passe notamment par l’isolement et l’identification de nouvelles molécules. L’Algérie, pays connu par ces ressources naturelles, dispose d’une flore riche et variée. On compte environ 3000 espèces de plantes dont 15% endémiques et appartenants à plusieurs familles botaniques (Savona et al.,1982). Dans les dayas et les dépressions fermées, le groupement caractéristique est l’association de Pistacia atlantica à Zizyphus lotus, accompagnée des Composées de genres Launeae, Anvillea, Bubonium, des Papilionacées, et association d’Haloxyloum scoparium et Euphorbia guyoniana… (Hamdi-Aissa et al., 2005). Au niveau des lits d’Oued et des vallées, c’est l’association de Panicum turgidum et Acacia raddiana qui domine (Ozenda, 1983). Les sols rocheux se caractérisent par Limoniastrum feii par une flore acceptant le sable dominée par des Stipagrostis sp. Les dayas sont généralement dominées par : Zilla macroptera, Launaea arborescens, Anvillea radiata et Bubonium graveolens. Les lits d’Oueds secs, à fond limoneux ou caillouteux, sont caractérisés par une formation à Acacia raddiana. Par ailleurs, les endroits salés se caractérisent par : Anvillea radiata Coss. & Durieu, Bubonium graveolens Less., Launaea arborescens, Zilla macroptera, Hyoscyamus muticus, Pergularia tomentosa, Gymnocarpos decander, Zizyphus lotus, Calotropis procera (Aiton) W.T. Aiton,Capparis spinosa L., Cotula cinerea Delile, Datura stramonium L. et Euphorbia calyptrata Coss. & Kralik. Synthèse bibliographique ~ 7 ~ Sur le plan taxonomique, la flore endémique de l’Algérie se répartit entre environ 60 familles, mais onze seulement affichent plus des deux tiers d’espèces et sous-espèces endémiques ; ce sont les suivantes : Asteraceae, Asclepiadaceae, Fabaceae, Brassicaceae, Caryophylaceae, Chenopodiaceae, Euphorbiaceae, Plumbaginaceae, Solanaceae et Rhamnaceae, (Tableau1)
Familles des plantes étudiées
Le mot « Aster » du grec signifie étoile, est en relation avec la forme de la fleur. Asteraceae (anciennement appelée : Composée) est une famille appartenant aux dicotylédones, comprenant plus de 1500 genres et plus de 25000 espèces décrites dont 750 sont endémiques, c’est une des familles la plus importante des angiospermes. Ce sont presque toujours des plantes herbacées avec souvent des racines charnues : rhizomateuses, tubéreuses ou pivotantes (Crète ,1965). Cette famille présente des caractères morphologiques divers : herbes annuelles ou vivaces, plus rarement des arbustes, arbres ou plantes grimpantes et quelques fois, plantes charnues (Bonnier, 1934). Bien que généralement, se soit des plantes herbacées aux feuilles isolées (Crète ,1965). L’aspect de l’appareil végétatif est trop variable pour caractériser les Asteraceae sur ce seul critère. En revanche, cette famille est très homogène au niveau de ses inflorescences très caractéristiques : le capitule ; le fruit est un akène généralement surmonté d’un pappus provenant du calice. La famille des astéracées comprend plus de 13 tribus, 1000 genres et 23000 espèces. En Algérie, il en existe 109 genres et 408 espèces et cette vaste famille est économiquement importante, vu que plusieurs de ses plantes sont cultivées pour leur valeur alimentaire (le tournesol, la laitue, la chicorée, la camomille, etc.) ou comme plantes décoratives (les dahlias, les asters, les gaillardes, etc). Les membres de la famille des Asteraceae sont distribués dans le monde entier et occupent un large éventail de l’habitat. Ils sont exceptionnellement riches en métabolites secondaires. Le développement de leur complexité morphologique et chimique a contribué à la réussite de l’évolution de la famille des asteraceae et la richesse de cette famille est la base de leur utilisation très répandue comme plantes médicinales (Heywood et al., 1977 ; Jeffrey, 2007 ). Généralement, ce sont des herbes annuelles, bisannuelles, plus ou moins pérennes. Ils possèdent des lianes herbacées grimpantes ou rampantes. Les feuilles sont très polymorphes, petites sans stipules, alternes ou opposées et en rosettes. Elles sont simples, entières ou dentelées et parfois divisées en plusieurs segments plus ou moins grands (Ndom, 2008). Synthèse bibliographique ~ 11 ~ I-2-1-1/ Position systématique des Asteraceae (Mezache, 2010) Embranchement : Phanerogamae,ü Sous-embranchement : Magnoliophytina (Angiospermes),ü Classe : Magnoliopsida (Dicotyledones),ü Sous-classe : Asteridae,ü Ordre : Asterales,ü Famille : Asteraceae.ü I-2-1-2/Principaux espèces étudiées de la famille Asteraceae : a/ Anvillea garcinii subsp. radiata (Coss. & Dur.): Anvillea radiata Coss. & Dur. (Asteraceae) (Ozenda, 1958 ; Quezel and Santa, 1963), est appelée aussi Anvillea garcinii subsp radiata (Anderberg, 1982) ; elle est communément appelée nougd l’hoor (Hammiche et Maiza, 2006), elle appartient à la famille des Asteraceae. Cette famille est bien marqué dans leur caractéristique et ne peut pas être confondue avec les autres. Une grande majorité des plantes appartenant à cette famille sont des herbacées, tandis que les arbres et les arbustes sont relativement rares (Okunade, 2002). A. radiata est une plante sauvage distribuée principalement dans les steppes de l’Afrique du Nord (Maroc et Algérie).La plante est utilisée dans la médecine populaire comme excellente chauffage, pour le traitement de la dysenterie, de troubles gastriquesintestinaux (Bellakhdar, 1997). a-1/Description botanique de la plante Anvillea garcini subsp. radiata (Coss. & Dur.): Anvillea garcini subsp. radiata (Coss. & Dur.) nom vernaculaire (Nogde), est un arbuste très rameux de 20-50 cm, à tige et rameaux ligneux à la base, à feuilles en triangle allongées ,qui sont atténuées à la base en pétiole, et à la limbe fortement dentée ; elle possède un grand capitule, de 4 à 5 cm de diamètre y compris les longues ligules, il est entouré des feuilles supérieures rayonnantes qui passent progressivement aux bractées ; les fleures sont toutes jaune-orangé; paillettes du réceptacle sont tronquées au sommet et sont prolongées en une soie; à chaines prismatiques, ceux de la périphérie à trois angles, ceux du centre du capitule à quatre angles, possédant des fleurs périphériques en longues ligules, atteignant jusqu’à 25 mm (Photo 1) (Quezel et Santa,1962).
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Table des matières
INTRODUCTION GENERALE
SYNTHESE BIBLIOGRAPHIQUE
I/Introduction
I-1/Rappel botanique
I-2/Familles des plantes étudiées
I-2-1/Asteraceae:
I-2-1-1/ Position systématique des Asteraceae
I-2-1-2/Principaux espèces étudiées de la famille Asteraceae
a/ Anvillea garcinii subsp. radiata (Coss. & Dur
a-1/Description botanique de la plante Anvillea garcini subsp. radiata (Coss. & Dur.).
a-2/Position systématique de la plante Anvillea garcini subsp. radiata (Coss. & Dur.).
b / Asteriscus graveolens (Forsk.)Less subsp. graveolens
b-1/Description botanique d’Asteriscus graveolens (Forsk.)Less subsp. graveolens
b-2/Position systématique d’Asteriscus graveolens (Forsk.)Less subsp. graveolens 14
c/ Brocchia cinerea (Delile) Vis
c-1/ Description botanique de Brocchia cinerea (Delile) Vis
c-2/ Position systématique de la plante Brocchia cinerea (Delile) Vis
d/ Launaea arborescens (Batt.) Murb
d-1/Description botanique de Launaea arborescens (Batt.) Murb
d-2/ Position systématique de la plante Launaea arborescens (Batt.) Murb
e / Launaea nudicaulis (L) Hook F.
e-1/Description botanique de Launaea nudicaulis (L) Hook F.
e-2/ Position systématique de la plante Launaea nudicaulis (L) Hook F.
f/ Warionia saharae
f-1/ Description botanique de Warionia saharae
f-2/ Position systémtique de la plante Warionia saharae
I-2-2/Fabaceae
a/ Acacia tortilis subsp. raddiana (Savi) Brenan
a-1/ Description botanique Acacia tortilis subsp. raddiana (Savi) Brenan
a-2/ Position systématique de la plante Acacia tortilis subsp. raddiana (Savi) Brenan .
I-2-3/ Brassicaceae
a/ Moricandia arvensis (L.)DC
a-1/ Description botanique de Moricandia arvensis (L.)DC
a-2/ Position systématique de la plante Moricandia arvensis (L.)DC
b/ Zilla spinosa subsp. macroptera (Coss.) Maire
b-1/ Description botanique de Zilla spinosa subsp. macroptera (Coss.) Maire
b-2/ Position systématique de la plante Zilla spinosa subsp. macroptera (Coss.) Maire 26
I-2-4/ Amaranthaceae
a/ Haloxylon articulata (Moq.)Bolos & Vigo
a-1/ Description botanique de Haloxylon articulata (Moq.)Bolos & Vigo
a-2/ Position systématique de la plante Haloxylon articulata (Moq.)Bolos & Vigo
I-2-5/Euphorbiaceae
I-2-5-1/Position systématique des la famille Euphorbiaceae
I-2-5-2/ Genre Euphorbia
a/Euphorbia guyoniana Boiss. et Reut
a-1/ Description botanique d’Euphorbia guyoniana
a-2/ Position systématique de la plante Euphorbia guyoniana
b/ Euphorbia retusa
b-1/ Description botanique d’Euphorbia retusa
b-2/ Position systématique de la plante Euphorbia retusa
I-2-6/Plumbaginaceae
a/ Ceratolimon feei (Girard) Crespo & Ledo
a-1/ Description botanique de Ceratolimon feei (Girard) Crespo & Ledo
a-2/ Position systématique de la plante Ceratolimon feei (Girard) Crespo & Ledo
I-2-7/Solanaceae
a/ Datura stramonium
a-1/ Description botanique de Datura stramonium
a-2/ Position systématique de la plante Datura stramonium
b /Hyoscyamus muticus L. ssp. falezlez (Coss.) Maire
b-1/ Position systématique de Hyoscyamus muticus subsp. Falezlez (Coss.) Maire
b-2/ Description botanique de Hyoscyamus muticus subsp. Falezlez (Coss.) Maire
I-2-8/ Asclepiadaceae (Apocynaceae
a/Calotropis procera Ait.
a-1/ Position systématique de la plante Calotropis procera Ait
a-2/ Description botanique de Calotropis procera Ait.
b/ Pergularia tomentosa L
b-1/ Position systématique de la plante Pergularia tomentosa L
b-2/ Description botanique de Pergularia tomentosa L
I-2-9/ Capparidaceae
a/Capparis spinosa L
a-1/ Position systématique de la plante Capparis spinosa L.
a-2/ Description botanique de Capparis spinosa L
I-2-10/ Rhamnaceae
a/ Zizyphus lotus subsp. Saharae (Batt &Trab.) Maire
a-1/ Position systématique de Zizyphus lotus subsp. Saharae (Batt &Trab.) Maire
a-2/ Description botanique de Zizyphus lotus subsp. Saharae (Batt &Trab.) Maire
I-2-11/ Caryophyllaceae
a/Gymnocarpos decandrus Forssk.
a-1/ Position systématique de la plante Gymnocarpos decandrus Forssk.
a-2/ Description botanique de Gymnocarpos decandrus Forssk.
I-2-12/ Verbenaceae
a/Lantana camara L.
a-1/ Position systématique de la plante Lantana camara L.
a-2/ Description botanique de Lantana camara L.
II/Généralités sur les invertébrés
II-1/Caractères généraux des nématodes
II-1-1/Morphologie et anatomie
II-1-1-1/ Morphologie
II-1-1-2/Anatomie
II-2/Les bases de la classification des nématodes phytoparasites
II-2-1/ Systématique
II-2-2/ Taxinomie
II-3/Mode de parasitisme
II-4/ Cycle de vie
II-4-1/ Les stades larvaires
II-4-2/ Éclosion des œufs
II-5/Espèces modèles d’étude des nématodes à kyste
II-5-1/Globodera sp
II-5-2/ Heterodera sp.
II-6/ Gamme d’hôtes, dégâts et symptômes
II-7/ Identification morphobiométrique
II-7-1/ Identification des genres
II-7-2/ Identification spécifique
II-7-3/ Organisation des fenêtres anales et vulvaires
II-8/Caractères généraux des mollusques
II-8-1/Morphologie et anatomie
II-8-1-1/ Morphologie
II-8-1-2/Anatomie des gastéropodes
II-9/ Hôte intermédiaire
II-9-1/ Classification
II-9-1-1/Famille Planorbidae( Sous famille : Bulinidae
II-9-1-2/Famille Lymnaeidae
II-9-4/ Systématique
II-9-5/ Cycle biologique
II-9-6/Ecologie des mollusques
II-10/Espèces modèle d’étude
II-10-1/ Bio-écologie de Bulinus truncatus
II-10-2/ Bio-écologie de Lymnaea stagnalis
II-10-3/ Bio-écologie de Lymnaea acumunata
III/Généralités sur les métabolites secondaires
III-1/Définition de la plante médicinale
III-3/ Métabolites secondaires et leurs activités
III-3-1/Alcaloides
III-3-1-1/Activité nématicide des alcaloides
III-3-1-2/Activité molluscicide des alcaloides
III-3-1-3/Plantes à alcaloïdes
III-3-2/Phénols
III -3-2-1/Activité nématicide des phénols
III -3-2-2/Activité molluscicide des phénols
III -3-2-3/Plantes aux phénols
III -3-3/ Flavonoïdes
III -3-3-1/Activité nématicide des flavonoïdes
III -3-3-2/Activité molluscicide des flavonoïdes
III -3-3-3/Plantes à flavonoïdes
III -3-4/Coumarines
III -3-4-1/Activité nématicide des coumarines
III -3-4-2/Activité molluscicide des coumarines
III -3-4-3/Plantes à coumarines
III -3-5/Tanins
III -3-5-1/Activité nématicide des tanins
III -3-5-2/Activité molluscicide des tanins
III -3-5-3/Plantes aux tanins
III -3-6/Terpènes
III V- 3-6-1/Activité nématicide des terpènes
III -3-6-2/Activité molluscicide des terpènes
III -3-6-3/Plantes aux terpènes
III -3-7/Saponines
III -3-7-1/Activité nématicide des saponines
III – 3-7-2/Activité molluscicide des saponines
III -3-7-3/Plantes aux saponines
III -4/Lutte contre les nématodes et mollusques
III -4-1/ Moyens de lutte contre les nématodes
III -4-1-1/ Mesures prophylactiques
III -4-1-2/ Méthodes de lutte biologique
III -4-1-3/ Utilisation de plantes nématicides
III -4-1-4/ Lutte chimique
III -4-1-5/ Lutte intégrée
III -4-2/ Moyens de lutte contre les mollusques
III -4-2-1/Moyens de lutte chimique
III-4-2-2/Moyens de lutte biologique
III -4-2-3/ Lutte malacologique
IIV/Conclusion
PARTIE EXPERIMENTALE
Matériel et méthodes
1. Objectif
2. Méthodologie de travail
2.1. Présentation de la région d’étude
2.2. Choix des stations d’étude et échantillonnage
3. Matériel végétal
3.1. Récolte
3.2. Préparation de l’extrait végétal
3.3. Méthode d’Extraction
3.3.1 Extraction aqueuse
a/ Par macération
b/ à Reflux
3.3.2. Extraction sélective
a. Dégraissage du matériel végétal
b. Protocole d’extraction par système
b.1. Extraction au méthanol/Eau
b.2. Extraction à l’acétone /Eau
b.3. Partitions entre solvants
3.3.3. Rendement d’extraction
c. Extraction des familles des métabolites secondaires
c.1. Extraction des saponosides
c.2. Extraction des tanins
d. Extraction par partage liquide-liquide
d.1. Extraction liquide-liquide
d.2.Partage à l’acétate d’éthyle
d.3.Partage au butanol
3.4. Screening phytochimique des plantes
3.4.1. Alcaloïdes
3.4.2. Saponosides
3.4.3. Tanins
3.4.4. Terpènoïdes
3.4.5. Flavonoïdes
3.5. Screening phytochimique des extraits
3.5.1. Alcaloïdes
3.5.2. Coumarines
3.5.3. Saponosides
3.5.4. Tanins
3.5.5. Flavonoïdes
3.5.6. Stérols et triterpènes
3.6. Séparation de l’extrait organique neutre
a. Chromatographie sur couches minces
b. Rapport frontal (Rf
3.7. Préparation des concentrations
4. Matériel animal
4.1. Les nématodes phytoparasites
4.1.1. Echantillonnage des sols infestés par les nématodes
4.1.2. Echantillons d’enquête faunistique
4.1.3. Techniques de prélèvement des échantillons
4.1.4. Collecte des échantillons de sol
4.1.5. Extraction des nématodes
a. Choix de la méthode d’extraction
b. Extraction à partir d’un sol sec
c. Récupération et préparation de l’extrait
c.1 – Récupération et séchage de l’extrait
c.2- Lecture
d. Conditionnement des kystes
e. L’extraction du refux de tamis à l’acétone
4.1.6. Tri visuel des kystes
4.1.7. Identification spécifique morphobiométrique
a. Examen des kystes
a.1.Examen externe à la loupe binoculaire
a.2.Examen microscopique de la région périnéale
b. Critères observés
4.1.8. Identification des principaux nématodes
4.2. Mollusques (gastéropodes d’eau douce
4.2.1. Stations prospectées des mollusques
4.2.2. Protocole d’étude
4.2.3. Prélèvement et transport des échantillons
4.2.4. Méthodes de capture et d’identification
4.2.5. Identification des mollusques d’eau douce
5. Etude des activités biologiques des extraits
5.1. Effet nématicide
5.1.1. Expérimentation in vivo
a. Dispositif expérimental
b. Conduite de l’essai
5.1.2. Préparation de l’inoculum et mise en culture
5.2. Effet molluscicide
6. Détermination de la LC50
RESULTATS
I.1.Rendements des extraits aqueux et organiques
I.2. Criblage phytochimique des extraits
I.3. Séparation de l’extrait organique neutre
I.4. Identification des nématodes
I.5. Identification des mollusques d’eau douce
I.6.Activité nématicide in vitro
I.7.Activité nématicide in vivo
I.8.Activité molluscicide
DISCUSSION
II.1.Criblage phytochimique
II.2. /Activité nématicide
II.2. 1/ In vitro
II.2. 2 / In vivo
II.3.Activité molluscicide
CONCLUSION GENERALE
REFERENCES BIBLIOGRAPHIQUES
ANNEXE
PUBLICATIONS
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